BD 流式细胞仪是集激光技术、电子物理、光电测量、计算机及细胞荧光化学技术于一体的多参数细胞分析仪器,广泛应用于生命科学研究和临床诊断领域。其核心功能是通过液流系统将细胞或微粒排列成单列,依次通过激光束检测点,利用光学系统激发荧光标记物并捕获散射光与荧光信号,最终通过电子系统将光信号转换为数字信号进行多维度分析。
其液流系统由鞘液管、样品管和喷嘴组成,通过流体动力学聚焦使细胞悬浮液形成直径约3-10μm的稳定液柱,确保每个细胞独立通过激光检测区。光学系统采用氩离子激光器(488nm)或氪离子激光器(647nm),激发细胞表面或内部的荧光染料(如FITC、PE)。前向散射光(FSC)反映细胞体积,侧向散射光(SSC)揭示胞内颗粒结构,而荧光信号强度则对应标记抗原或核酸的浓度。光电倍增管(PMT)将光信号转换为电脉冲,经模数转换后生成FCS格式数据文件。
BD 流式细胞仪在实验前准备:
1、仪器校准与质检
开机预热:提前30分钟开机,使激光和检测系统稳定。
光路校准:使用标准荧光微球(如Flow Check或CytoGlow)调整激光延迟、灵敏度及PMT电压,确保液流居中。
检查背景噪声:运行缓冲液(如PBS),确保散射光和荧光通道的基线平稳,无异常信号。
2、样本制备
细胞浓度:调整细胞浓度至5×10⁵~1×10⁶cells/mL(过高易导致堵塞,过低降低检测效率)。
单细胞悬液:机械法(研磨)或酶消化法(如胶原酶)处理组织,过滤去除团块。
3、染色与孵育:
表面抗体:4℃避光孵育15~30分钟,PBS洗涤后重悬。
胞内染色:破膜剂(如BD Fix&Perm)处理后孵育胞内抗体。
活性染料:如PI(死细胞染色)或Calcein-AM(活细胞标记)。
4、对照设置:
空白对照:未染色的细胞用于确定荧光阈值。
单标对照:单个荧光标记的样本用于调整补偿(Compensation)。
同型对照:用于排除非特异性结合(如ISO型抗体)。